Гистогенетические корреляции невусов и меланомы (обзор литературы)

Статья в сборнике трудов конференции
DOI: 10.31483/r-102368
Open Access
V Всероссийская научно-практическая конференция с международным участием «Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии»
Creative commons logo
Опубликовано в:
V Всероссийская научно-практическая конференция с международным участием «Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии»
Автор:
Тимаева А. И. 1 , Антонова Е. И. 1 , Куницына А. В. 1 , Ачилов А. Б. 1 , Балацюк Е. В. 1
Рубрика:
Клеточная биология, цитология, гистология, анатомия и физиология
Страницы:
152-162
Получена: 11.05.2022

Рейтинг:
Статья просмотрена:
840 раз
Размещено в:
РИНЦ
1 Научно-исследовательский центр фундаментальных и прикладных проблем биоэкологии и биотехнологии ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный педагогический университет им. И.Н. Ульянова»
Для цитирования:
Гистогенетические корреляции невусов и меланомы (обзор литературы): сборник трудов конференции. / А. И. Тимаева, Е. И. Антонова, А. В. Куницына [etc.] // Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии : материалы V Всерос. науч.-практич. конф. с международным участием (Ульяновск, May 20, 2022) / editorial board: Е. И. Антонова [etc.] – Чебоксары: «Лару-тăру» («Среда») издательство çурчě, 2022. – pp. 152-162. – ISBN 978-5-907561-33-5. – DOI 10.31483/r-102368.

Аннотаци

Меланома – одно из наиболее распространенных в мире онкологических заболеваний кожи и в ряде стран занимает лидирующее положение среди онкозаболеваний. Это злокачественное новообразование характеризуется агрессивным течением и высоким потенциалом к метастазированию. Отмечается два пути развития меланомы: в результате чрезмерного размножения и перерождения пигментных клеток кожи – меланоцитов, так называемая меланома in situ (de novo) и невус-ассоциированный путь развития меланомы. При невус-ассоциированном пути меланома развивается чаще всего на фоне предшествующих простых (меланоцитарные, пограничные, внутридермальные) и диспластических типов невуса. Достоверное перерождение невуса в меланому можно установить только при гистологическом и молекулярно-генетическом исследовании. В связи с неудовлетворительными результатами лечения меланомы поиск новых путей для улучшения ранней диагностики и первичной профилактики как меланомы, так и невусов, представляет особую актуальность.

Список литературы

  1. 1. Balch C.M. This study is the current basis for the staging of primary melanomas based on their thickness, ulceration and mitoses, and of metastatic melanomas based on the sites involved // Final version of 2009 AJCC melanoma staging and classification. – 2009. – №27. – P. 6199–6206.
  2. 2. Bastian B.C. The molecular pathology of melanoma: an integrated taxonomy of melanocytic neoplasia / B.C. Bastian // Annu. Rev. Pathol. – 2014. – Vol. 9, №239.
  3. 3. Bevona C. Cutaneous Melanomas Associated With Nevi // Archives of Dermatology. – 2003. – Vol. 139, №12. – P. 1620.
  4. 4. Calcinotto A. Cellular Senescence: Aging, Cancer, and Injury // Physiological Reviews. – 2019. – Vol. 99, №2. – P. 1047–1078.
  5. 5. Campisi J. Cellular senescence: when bad things happen to good cells // Nature Reviews Molecular Cell Biology. – 2007. – Vol. 8, №9. – P. 729–740.
  6. 6. Clark W.H. Origin of familial malignant melanomas from heritable melanocytic lesions. The B-K mole syndrome’ // Arch. Dermatol. – 2007. – №114. – P. 732–738.
  7. 7. Costin G. Human skin pigmentation: melanocytes modulate skin color in response to stress // FASEB J. – 2007. – Vol. 21. – P. 976–994.
  8. 8. Cui R. Central role of p53 in the suntan response and pathologic hyperpigmentation / R. Cui // Cell. – 2007. – Vol. 853, №128.
  9. 9. Curtin J.A. Distinct sets of genetic alterations in melanoma / J.A. Curtin, et al. // N. Engl. J. Med. 353, 2135. – 2005. – Vol. 353, №2135. Maldonado, J.L. et al. Determinants of BRAF mutations in primary melanomas. J. Natl Cancer Inst. 95, 1878–1890 (2003).
  10. 10. Damsky W.E. Melanocytic nevi and melanoma: unraveling a complex relationship // Oncogene. – 2017. – №189.
  11. 11. Dong J. BRAF oncogenic mutations correlate with progression rather than initiation of human melanoma // Cancer Res. – 2016. – Vol. 63. – P. 3883–3885.
  12. 12. Duffy K. The dysplastic nevus: from historical perspective to management in the modern era: Part I / Grossman // Historical, histologic, and clinical aspects. J. Am. Acad. Dermatol. 67, 1.e1–1.e16. – 2012. – №67.
  13. 13. Filosa A. Melanoma Diagnosis: The Importance of Histopathological Report // Dermatopathology. – 2018. – Vol. 5, №1. – P. 41–43.
  14. 14. Florell S.R. Proliferation, apoptosis, and survivin expression in a spectrum of melanocytic nevi / S.R. Florell, A.R. Bowen // Cutan. Pathol. – 2005. – №32. – P. 45–49.
  15. 15. Gerami P. Fluorescence in situ hybridization for distinguishing nevoid melanomas from mitotically active nevi // Am. J. Surg. Pathol. – 2009. – №33. – P. 1783–1788.
  16. 16. Glatz K. Frequent mitotic activity in banal melanocytic nevi uncovered by immunohistochemical analysis / K. Glatz, C. Hartmann // Am. J. Dermatopathol. – 2010. – Vol. 32. – P. 643–649.
  17. 17. Goldstein A.M. Dysplastic Nevi and Melanoma // Cancer Epidemiology Biomarkers & Prevention. – 2013. – Vol. 22, №4. – P. 528–532.
  18. 18. Hodis E. A landscape of driver mutations in melanoma / E. Hodis // Cell. – 2012. – Vol. 150.
  19. 19. Horn S. Horn, S. et al. TERT promoter mutations in familial and sporadic melanoma / S. Horn // Science 339, 959. – 2013. – №339. – P. 959.
  20. 20. Huang F.W. Highly recurrent TERT promoter mutations in human melanoma / F.W. Huang // Science. – 2013. – №339.
  21. 21. Jensen S.L. Mitoses in conventional melanocytic nevi / J. Cutan // Pathol. – 2007. – Vol. 34. – P. 713–715.
  22. 22. Jimbow K. Mitotic activity in non-neoplastic melanocytes in vivo as determined by histochemical, autoradiographic, and electron microscope studies / K. Jimbow, S. Roth, T. Fitzpatrick // J. Cell Biol. – 1975. – Vol. 66. – P. 663–670.
  23. 23. Kanitakis J. Anatomy, histology and immunohistochemistry of normal human skin / J. Kanitakis // Eur. J. Dermatol. – 2017. – Vol. 12. – P. 390–399.
  24. 24. Kelly J. W. et al. Sunlight: a major factor associated with the development of melanocytic nevi in Australian schoolchildren // Am. Acad. Dermatol. – 2009. – №30. – P. 40–48.
  25. 25. Krauthammer M. et al Exome sequencing identifies recurrent somatic RAC1 mutations in melanoma / M. Krauthammer // Nat. Genet. – 2012. – Vol. 44. – P. 1006.
  26. 26. Krauthammer M. Exome sequencing identifies recurrent mutations in NF1 and RASopathy genes in sun-exposed melanomas // Nat. Genet. – 2015. – Vol. 47. – P. 996–1002.
  27. 27. Lebe B. he significance of Ki-67 proliferative index and cyclin D1 expression of dysplastic nevi in the biologic spectrum of melanocytic lesions / The significance of // Appl. Immunohistochem. Mol. Morphol. – 2007. – №15. – P. 160–164.
  28. 28. LeBoit P.E. Fire Your Dermatopathologist! // Archives of Dermatology. – 2016. – Vol. 135, №2.
  29. 29. Mancianti M.L. Growth and phenotypic characteristics of human nevus cells in culture // J. Invest. Dermatol. – 2001. – №90. – P. 134–141.
  30. 30. Menzies A.M. et al. Distinguishing clinicopathologic features of patients with V600E and V600K BRAF-mutant metastatic melanoma // Clin. Cancer Res. – 2012. – №18. – P. 3242–3249.
  31. 31. Michaloglou C. BRAFE600-associated senescence-like cell cycle arrest of human naevi // Nature. – 2005. – Vol. 436, №7051. – P. 720–724.
  32. 32. Moretti S. Ki67 antigen expression correlates with tumor progression and HLA-DR antigen expression in melanocytic lesions // Invest. Dermatol. 95, 320–324. – 1990. – №95. – P. 320–324.
  33. 33. Mort R.L. The melanocyte lineage in development and disease / R.L. Mort, I.J. Jackson, E.E. Patton // Development. – 2015. – Vol. 142, №7. – P. 1387–1387.
  34. 34. Okamoto N.A melanocyte-melanoma precursor niche in sweat glands of volar skin // Pigment Cell. Melanoma Res. – 2014. – Vol. 27. – P. 1039–1050.
  35. 35. Omholt K. NRAS and BRAF mutations arise early during melanoma pathogenesis and are preserved throughout tumor progression // Clin. Cancer Res. – 2003. – Vol. 9. – P. 6483–6488.
  36. 36. Pampena R., Kyrgidis A., Lallas A., Moscarella E., Argenziano G., Longo C. A meta-analysis of nevus-associated melanoma: Prevalence and practical implications. J Am Acad Dermatol. 2017 Nov; 77(5): 938–945. e4.
  37. 37. Pampena R. Nevus-associated melanoma: facts and controversies // Giornale Italiano di Dermatologia e Venereologia. – 2020. – Vol. 155, №1.
  38. 38. Patton E.E. BRAF mutations are sufficient to promote nevi formation and cooperate with p53 in the genesis of melanoma. Curr // Curr. Biol. – 2005. – №15. – P. 249–254.
  39. 39. Pavlotsky F. Prevalence of melanocytic nevi and freckles in young Israeli males. Correlation with melanoma incidence in Jewish migrants: demographic and host factors // Am. J. Epidemiol. – 1997. – Vol. 146. – P. 78–86.
  40. 40. Pfeifer G.P. Mutations induced by ultraviolet light. Mutat // Res. Mol. Mech. Mutag. – 2005. – №571. – P. 19–31.
  41. 41. Piérard G.E. Cell Proliferation in Cutaneous Malignant Melanoma: Relationship with Neoplastic Progression // ISRN Dermatology. – 2012. – Vol. 2012. – P. 1–12.
  42. 42. Pollock P.M. This study demonstrated that BRAF V600E mutations are frequent in melanocytic naevi, implicating BRAF V600E as an initiating mutation during the evolution of melanoma // High frequency of BRAF mutations in nevi. Nat. Genet. – 2003. – №233. – P. 19–20.
  43. 43. Rivers J.K. Is there more than one road to melanoma? // The Lancet. – 2004. – Vol. 363, №9410. – P. 728–730.
  44. 44. Rudolp P [et al.] Proliferation marker Ki-S5 as a diagnostic tool in melanocytic lesions // Journal of the American Academy of Dermatology. – 1997. – Vol. 37, №2. – P. 169–178.
  45. 45. Ruiz R. Dynamics of nevus development implicate cell cooperation in the growth arrest of transformed melanocytes / R. Ruiz // Vega [et al.] // eLife. – 2020. – Vol. 9.
  46. 46. Sakamoto M., Morimoto N., Jinno C., Mahara A., Ogino S., Suzuki S., et al. Novel pleiotropic risk loci for melanoma and nevus density implicate multiple biological pathways Correction in: Nat Commun. 2019; 10: 299.
  47. 47. Shain A.H. Exome sequencing of desmoplastic melanoma identifies recurrent NFKBIE promoter mutations and diverse activating mutations in the MAPK pathway // Nat. Genet. – 2015. – Vol. 47. – P. 1194–1199.
  48. 48. Shain H.A [et al.]. The Genetic Evolution of Melanoma from Precursor Lesions // New England Journal of Medicine. – 2015. – Vol. 373, №20. – P. 1926–1936.
  49. 49. Shain H.A. From melanocytes to melanomas / H.A. Shain, B.C. Bastian // Nature Reviews Cancer. – 2016. – Vol. 16, №6. – P. 345–358.
  50. 50. Shannon A.B. Age and Melanocytic Lesions // Surgical Oncology Clinics of North America. – 2020. – Vol. 29, №3. – P. 369–386.
  51. 51. Shitara D. Nevus-Associated Melanomas / D. Shitara [et al.] // American Journal of Clinical Pathology. – 2014. – Vol. 142, №4. – P. 485–491.
  52. 52. Shitara D. Nevus-associated melanomas: clinicopathologic features // Am. J. Clin. Pathol. – 2014. – №142. – P. 485–491.
  53. 53. Soo J.K. Malignancy without immortality? Cellular immortalization as a possible late event in melanoma progression // Pigment Cell MelanomanRes. – 2011. – №24. – P. 490–503.
  54. 54. Stadelmeyer E. The BRAF V600K mutation is more frequent than the BRAF V600E mutation in melanoma in situ of lentigo maligna type // Dermatol. – 2014. – №134. – P. 548–550.
  55. 55. This Cancer Genome Atlas (TCGA) project represents the most comprehensive genomic and transcriptomic characterization of cutaneous melanoma to date // Cancer Genome Atlas Network. Genomic classification of cutaneous melanoma. – 2015. – Vol. 161. – P. 1681–1696.
  56. 56. Tilley C. Christopher D. M. Fletcher Diagnostic Histopathology of Tumors, 4th Edition Elsevier Saunders, Philadelphia, 2013. 2296 Pages. Price £313.95. ISBN-10: 1437715346; ISBN-13: 978–1437715347 / C. Tilley // Neuropathology and Applied Neurobiology. – 2015. – Vol. 41, №6. – P. 853–853.
  57. 57. Weedon's Skin Pathology: a.c. 978–0702075827 / J.W. Patterson. – №0702075825; опубл. 04.05.2020.
  58. 58. Wei-Wen S. Nevi, dysplastic nevi, and melanoma: Molecular and immune mechanisms involving the progression / S. Wei-Wen // Tzu Chi Med J. – 2021.
  59. 59. Whiteman D. Melanocytic nevi, solar keratoses, and divergent pathways to cutaneous melanoma // J. Natl Cancer Inst. 95, 806. – 2012. – №95.
  60. 60. Yazdi A.S. Mutations of the BRAF gene in benign and malignant melanocytic lesions // J. Invest. Dermatol. – 2003. – Vol. 121. – P. 1160–1162.
  61. 61. Yeh I. Clonal BRAF mutations in melanocytic nevi and initiating role of BRAF in melanocytic neoplasia // Natl Cancer Inst. – 2013. – Vol. 105. – P. 917–919.
  62. 62. Zalaudek I. Frequency of dermoscopic nevus subtypes by age and body site: a cross-sectional study // Arch. Dermatol. – 2011. – Vol. 147. – P. 663–670.
  63. 63. Damsky W.E. Melanocytic nevi and melanoma: unraveling a complex relationship // Oncogene. – 2017. – Vol. 36, №42. – P. 5771–5792.
  64. 64. Clark W. H [et al.] A study of tumor progression: the precursor lesions of superficial spreading and nodular melanoma // Human Pathology. – 1984. – Vol. 15, №12. – P. 1147–1165.
  65. 65. Lu Z [et al.] Effect of Xuezhikang, an Extract From Red Yeast Chinese Rice, on Coronary Events in a Chinese Population With Previous Myocardial Infarction // The American Journal of Cardiology. – 2008. – Vol. 101, №12. – P. 1689–1693.

Комментарии(0)

При добавлении комментария укажите:
  • степень актуальности публикуемого материала;
  • общую оценку (оригинальность и актуальность темы, полнота, глубина, всесторонность раскрытия темы, логичность, связность, доказательность, структурная упорядоченность, характер и достоверность примеров, иллюстративного материала, убедительность выводов);
  • недостатки, недочеты;
  • вопросы и пожелания Автору.