- Main
- Conference
- Fundamental and applied research for key propriety...
- Stimuliatsiia gumoral'nogo immuniteta protiv ortok...
Stimuliatsiia gumoral'nogo immuniteta protiv ortokhantavirusa s pomoshch'iu mikrovezikul
Proceeding


- Published in:
- All-Russian scientific conference with International Participation «Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology»
- Authors:
- Laiali Shkair 1 , Ekaterina E. Garanina 2 , Ekaterina V. Martynova 1 , Aliona I. Kolesnikova 1 , Albert A. Rizvanov 3 , Svetlana F. Khaibullina 1
- Work direction:
- Биохимия и токсикология (биохимические, иммунологические, токсикологические исследования)
- Pages:
- 226-231
- Received: 18 May 2022
- Rating:
- Article accesses:
- 1305
- Published in:
- РИНЦ
- APA
For citation:
Shkair L., Garanina E. E., Martynova E. V., Kolesnikova A. I., Rizvanov A. A., & Khaibullina S. F. (2022). Stimuliatsiia gumoral'nogo immuniteta protiv ortokhantavirusa s pomoshch'iu mikrovezikul. Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology, 226-231. Чебоксары: PH "Sreda". https://doi.org/10.31483/r-102526
- ВКонтакте
- РћРТвЂВВВВВВВВнокласснРСвЂВВВВВВВВРєРСвЂВВВВВВВВ
- РњРѕР№ Р В Р’В Р РЋРЎв„ўР В Р’В Р РЋРІР‚ВВВВВВВВРЎР‚
DOI: 10.31483/r-102526
Abstract
Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (ГЛПС) является природно-очаговым инфекционным заболеванием, которое представляет собой угрозу общественному здравоохранению. Большинство случаев ГЛПС в России регистрируются в Поволжье, где в качестве инфекционного агента в основном идентифицируется вирус Пуумала (PUUV). Лечение ГЛПС носит симптоматический характер, при этом отсутствие специфических мер профилактики, равно как и одобренных вакцин, являются существенным недостатком. С недавнего времени микровезикулы (МВ) рассматриваются в качестве перспективных носителей для доставки вакцинных антигенов, поскольку было показано, что они индуцируют врожденные и адаптивные иммунные реакции. Целью настоящего исследования являлась оценка эффективности (МВ) в качестве средств для доставки структурных белков PUUV и индукция иммунного ответа. Нами было показано, что МВ, несущие белки нуклеокапсида (N) и гликопротеины (Gn / Gc) PUUV способны индуцировать специфический гуморальный иммунный ответ in vivo, что является одним из ключевых факторов в разработке методов вакцинопрофилактики.
Funding Agency | Grant Number |
---|---|
Russian Science Foundation | 19-74-00113. |
References
- 1. Federal Service for Surveillance on Consumer Rights Protection and Human Welfare On the State of Sanitary and Epidemiological Well-Being of the Population in the Russian Federation in 2020 [(accessed on 12 December 2021)]; 2021 Available online: https://www.rospotrebnadzor.ru/upload/iblock/5fa/gd-seb_02.06-_s-podpisyu_.pdf.
- 2. Garanina E., Martynova E., Davidyuk Y., Kabwe E., Ivanov K., Titova A., Markelova M., Zhuravleva M., Cherepnev G., Shakirova V.G., et al. Cytokine Storm Combined with Humoral Immune Response Defect in Fatal Hemorrhagic Fever with Renal Syndrome Case, Tatarstan, Russia. Viruses. 2019;11:601. doi: 10.3390/v11070601.
- 3. Geldmacher A., Skrastina D., Borisova G., Petrovskis I., Krüger D.H., Pumpens P., Ulrich R. A hantavirus nucleocapsid protein segment exposed on hepatitis B virus core particles is highly immunogenic in mice when applied without adjuvants or in the presence of pre-existing anti-core antibodies. Vaccine. 2005;23:3973–3983. doi: 10.1016/j.vaccine.2005.02.025.
- 4. Geldmacher A., Skrastina D., Petrovskis I., Borisova G., Berriman J.A., Roseman A.M., Crowther R.A., Fischer J., Musema S., Gelderblom H.R., et al. An amino-terminal segment of hantavirus nucleocapsid protein presented on hepatitis B virus core particles induces a strong and highly cross-reactive antibody response in mice. Virology. 2004;323:108–119. doi: 10.1016/j.virol.2004.02.022.
- 5. Gerritzen M.J.H., Martens D.E., Wijffels R.H., van der Pol L., Stork M. Bioengineering bacterial outer membrane vesicles as vaccine platform. Biotechnol. Adv. 2017;35:565–574. doi: 10.1016/j.biotechadv.2017.05.003.
- 6. Gomzikova M.O., Aimaletdinov A.M., Bondar O.V., Starostina I.G., Gorshkova N.V., Neustroeva O.A., Kletukhina S.K., Kurbangaleeva S.V., Vorobev V.V., Garanina E.E., et al. Immunosuppressive properties of cytochalasin B-induced membrane vesicles of mesenchymal stem cells: Comparing with extracellular vesicles derived from mesenchymal stem cells. Sci. Rep. 2020;10:10740. doi: 10.1038/s41598-020-67563-9.
- 7. Gomzikova M.O., Kletukhina S.K., Kurbangaleeva S.V., Neustroeva O.A., Vasileva O.S., Garanina E.E., Khaiboullina S.F., Rizvanov A.A. Mesenchymal Stem Cell Derived Biocompatible Membrane Vesicles Demonstrate Immunomodulatory Activity Inhibiting Activation and Proliferation of Human Mononuclear Cells. Pharmaceutics. 2020;12:577. doi: 10.3390/pharmaceutics12060577.
- 8. Guardado-Calvo P., Rey F.A. The Envelope Proteins of the Bunyavirales. Adv. Virus Res. 2017;98:83–118. doi: 10.1016/bs.aivir.2017.02.002.
- 9. Jiang D.B., Zhang J.P., Cheng L.F., Zhang G.W., Li Y., Li Z.C., Lu Z.H., Zhang Z.X., Lu Y.C., Zheng L.H., et al. Hantavirus Gc induces long-term immune protection via LAMP-targeting DNA vaccine strategy. Antivir. Res. 2018;150:174–182. doi: 10.1016/j.antiviral.2017.12.011.
- 10. Jonsson C.B., Figueiredo L.T.M., Vapalahti O. A global perspective on hantavirus ecology, epidemiology, and disease. Clin. Microbiol. Rev. 2010;23:412–441. doi: 10.1128/CMR.00062–09.
- 11. Laenen L., Vergote V., Calisher C.H., Klempa B., Klingström J., Kuhn J.H., Maes P. Hantaviridae: Current Classification and Future Perspectives. Viruses. 2019;11:788. doi: 10.3390/v11090788.
- 12. Lundkvist A., Kallio-Kokko H., Sjölander K.B., Lankinen H., Niklasson B., Vaheri A., Vapalahti O. Characterization of Puumala virus nucleocapsid protein: Identification of B-cell epitopes and domains involved in protective immunity. Virology. 1996;216:397–406. doi: 10.1006/viro.1996.0075.
- 13. Mehanny M., Koch M., Lehr C.M., Fuhrmann G. Streptococcal Extracellular Membrane Vesicles Are Rapidly Internalized by Immune Cells and Alter Their Cytokine Release. Front. Immunol. 2020;11:80. doi: 10.3389/fimmu.2020.00080.
- 14. Mir M.A. Hantaviruses. Clin. Lab. Med. 2010;30:67–91. doi: 10.1016/j.cll.2010.01.004.
- 15. Pap E., Pállinger É., Pásztói M., Falus A. Highlights of a new type of intercellular communication: Microvesicle-based information transfer. Inflamm. Res. 2009;58:1–8. doi: 10.1007/s00011-008-8210-7.
- 16. Shakirova V., Martynova E., Saubanova A., Khaertynova I., Khaybullina S., Garanina E. Analysis of markers of renal damage in patients with hantaan hemorrhagic fever. Pract. Med. 2019;17:97–102. doi: 10.32000/2072-1757-2019-8-97-102.
- 17. Shkair L., Garanina E.E., Stott R.J., Foster T.L., Rizvanov A.A., Khaiboullina S.F. Membrane Microvesicles as Potential Vaccine Candidates. Int. J. Mol. Sci. 2021;22:1142. doi: 10.3390/ijms22031142.
- 18. Stahl P.D., Raposo G. Extracellular Vesicles: Exosomes and Microvesicles, Integrators of Homeostasis. Physiology. 2019;34:169–177. doi: 10.1152/physiol.00045.2018.
- 19. Sung J.H., Yang H.M., Park J.B., Choi G.S., Joh J.W., Kwon C.H., Chun J.M., Lee S.K., Kim S.J. Isolation and characterization of mouse mesenchymal stem cells. Transplant. Proc. 2008;40:2649–2654. doi: 10.1016/j.transproceed.2008.08.009.
- 20. Tkachenko E.A., Ishmukhametov A.A., Dzagurova T.K., Bernshtein A.D., Morozov V.G., Siniugina A.A., Kurashova S.S., Balkina A.S., Tkachenko P.E., Kruger D.H., et al. Hemorrhagic Fever with Renal Syndrome, Russia. Emerg. Infect. Dis. 2019;25:2325–2328. doi: 10.3201/eid2512.181649.
Documents
Full text (RUS)
373.01KbLinks
Digest
https://phsreda.com/en/action/10364/infoExport citation
BibTex
.bib
Comments(0)